banner

Блог

Aug 23, 2023

Структурные основы синтеза пептидогликана E. coli RodA

Nature Communications, том 14, номер статьи: 5151 (2023) Цитировать эту статью

Доступы 1921 года

35 Альтметрика

Подробности о метриках

Пептидогликан (ПГ) является важным структурным компонентом бактериальной клеточной стенки, который синтезируется во время клеточного деления и удлинения. ПГ образует внеклеточный полимер, имеющий решающее значение для жизнеспособности клеток, синтез которого является целью многих антибиотиков. Для сборки PG требуется гликозилтрансфераза (GT) для создания гликанового полимера с использованием субстрата липида II, который затем сшивается с существующим PG посредством транспептидазной (TP) реакции. Фермент GT формы, удлинения, деления и споруляции (SEDS) и пенициллин-связывающий белок класса B (PBP) образуют ядро ​​мультибелкового комплекса, необходимого для сборки PG. Здесь мы использовали одночастичную криоэлектронную микроскопию для определения структуры комплекса E. coli RodA-PBP2, специфичного для удлинения клеток. Мы объединяем эту информацию с биохимическим, генетическим, спектроскопическим и компьютерным анализом, чтобы идентифицировать сайты связывания липида II и предложить механизм полимеризации липида II. Наши данные позволяют предположить гипотезу о движении гликановой цепи от сайта полимеризации липида II RodA к сайту TP PBP2, функционально связывая эти две центральные ферментативные активности, необходимые для биосинтеза пептидогликана клеточной стенки.

Форма клеток у бактерий определяется и поддерживается внеклеточным полимером пептидогликаном (ПГ), сетчатым мешочком, окружающим цитоплазматическую мембрану, состоящим из полимеризованных гликановых цепей, сшитых короткими пептидами1. Синтез PG ограничивает скорость роста бактерий, а его нарушение приводит к лизису клеток или прекращению роста, что используется многими природными продуктами и полусинтетическим антибиотиками2,3,4,5. К ним относятся β-лактамы, наиболее клинически успешные антибиотики на сегодняшний день6,7. Цитоплазматические белки, которые синтезируют предшественника PG, Липид II – ундекапренил (C55) пирофосфат (Und-PP)-связанный дисахарид N-ацетилглюкозамина (GlcNAc) и пентапептид N-ацетилмурамовой кислоты (MurNAc) – и внеклеточные белки, ответственные за последующая полимеризация PG была индивидуально охарактеризована биохимически и структурно8,9.

В периплазме биосинтез PG начинается с специфичной для Липида II гликозилтрансферазы (GT), которая образует полимер гликановой цепи путем связывания дисахаридов двух молекул Липида II, одна из которых называется донором, а другая - акцептором, и тем самым высвобождает Und-PP из периплазмы. донорский участок (рис. 1а). После того, как две исходные молекулы Липида II соединяются вместе, образующийся тетрадисахарид, присоединенный к Und-PP, называемый Липидом IV, становится донором для другого акцептора Липида II, в свою очередь связывая его тетрасахарид с дисахаридом Липида II. с получением липида VI. Этот цикл повторяется процессивно, создавая все более длинные полисахаридные цепи, присоединенные к Und-PP (римская цифра обозначает количество моносахаридных групп в полисахаридной цепи). Как только растущий гликановый полимер достигает достаточной длины, он прикрепляется к существующему PG-саккулюсу посредством пептидных поперечных связей между пентапептидом гликановой цепи и пептидным стеблем существующего PG-саккулюса с помощью транспептидазы (TP) с образованием сшитого PG (рис. 1а). В E. coli GT RodA из семейства Shape, Elongation, Division and Sporulation (SEDS) и PBP2, монофункциональный пенициллин-связывающий белок TP класса B, опосредуют эти соответствующие ферментативные задачи10. RodA представляет собой интегральный мембранный белок, состоящий из десяти трансмембранных (TM) спиралей11, тогда как PBP2 имеет одну спираль TM и внеклеточный домен с классической складкой PBP класса B, содержащей активный сайт TP12,13. Вместе они составляют ядро ​​элонгасомы14, комплекса, ответственного за определение формы бактериальной палочки. Несмотря на недавние достижения в нашем понимании этой молекулярной машины15,16, не в последнюю очередь на основе кристаллической структуры комплекса Thermus thermophilus RodA-PBP217, фундаментальные вопросы механизма остаются нерешенными. Они включают характеристику молекулярных детерминант и конформационных состояний, необходимых для i) связывания липида II, ii) GT-полимеризации гликановых нитей и iii) последующей транслокации гликанового полимера в активный сайт TP.

95% humidity. Images were recorded using a Titan Krios electron microscope (FEI), at the Columbia University Cryo-Electron Microscopy Center, equipped with an energy filter and a K3 direct electron detection filter camera (Gatan K3-BioQuantum) using a 0.83 Å pixel size. An energy filter slit width of 20 eV was used during the collection and was aligned automatically every hour using Leginon43. Data collection was performed using a dose of ~58.5 e-/Å2 across 50 frames (50 ms per frame) at a dose rate of approximate 16.1 e–/pix/s, using a set defocus range of -1 μm to -2.5 μm. A 100 µm objective aperture was used. 11,120 micrographs were recorded over a two-day collection./p> 1.1 nm), and van der Waals (VdW) interactions also used a cut-off of 1.1 nm (both with the Verlet cut-off scheme). The P-LINCS algorithm expanded up to 4th order was used for the treatment of holonomic constraints77. Each system was equilibrated for 10 ns, after which 10 μs production runs were prepared from the coordinates and velocities of the final frames of the equilibration trajectories. For RodA and RodA-PBP2, 50 repeats of the production simulations were conducted./p>

3.0.CO;2-H" data-track-action="article reference" href="https://doi.org/10.1002%2F%28SICI%291096-987X%28199709%2918%3A12%3C1463%3A%3AAID-JCC4%3E3.0.CO%3B2-H" aria-label="Article reference 77" data-doi="10.1002/(SICI)1096-987X(199709)18:123.0.CO;2-H"Article CAS Google Scholar /p>

ДЕЛИТЬСЯ